超氧化物歧化酶(SOD)活性檢測試劑盒說(shuō)明書(shū)微量法

注意：正式測定前務(wù)必取 2-3 個(gè)預期差異較大的樣本做預測定。

規格：100T/96S

產(chǎn)品內容：

試劑一：液體 20mL×1 瓶，4℃避光保存；

試劑二：粉劑 ×1 支，4℃避光保存；臨用前使用20ml試劑一充分溶解，配好的試劑4℃避光可保存一周。

試劑三：液體 110μL×1 支，4℃保存；臨用前將試劑三用蒸餾水稀釋10 倍，用多少配多少。試劑四：液體 2.5mL×1 瓶，-20℃保存。

試驗中所需的儀器和試劑：

可見(jiàn)分光光度計/酶標儀、臺式離心機、可調式移液器、微量比色皿/96 孔板、研缽、冰和蒸餾

水

產(chǎn)品說(shuō)明：

SOD（EC 1.15.1.1）廣泛存在于動(dòng)物、植物、微生物和培養細胞中，催化超氧化物陰離子發(fā)生岐化作用，生成 H2O2 和 O2。SOD 不僅是超氧化物陰離子清除酶，也是 H2O2 主要生成酶，在生物抗氧化系統中具有重要作用。

通過(guò)黃嘌呤及黃嘌呤氧化酶反應系統產(chǎn)生超氧陰離子(O2-.)，O2-.可與 WST-8 反應產(chǎn)生水溶性染料甲臜，后者在 450nm 處有吸收；SOD 可清除 O2-.，從而抑制了甲臜的形成；反應液黃色越深，說(shuō)明SOD 活性愈低，反之活性越高。

操作步驟：

一、樣品的前處理：

(1)細菌、細胞或組織樣品的制備：

先收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清，按照每 500 萬(wàn)細菌或細胞加入 1mL 提取液（生理鹽水或者PBS），超聲波破碎（功率 20%或 200w，超聲 3s，間隔 10s，重復 30 次）。8000g 4℃離心 10 分鐘，取上清， 置冰上待測。

稱(chēng)取約 0.1g 組織，加入 1mL 提取液（生理鹽水或者PBS）進(jìn)行冰浴勻漿； 8000g 4℃離心 10 分鐘，取上清，置冰上待測。

(2)血清(漿)樣品：直接檢測二、測定操作表：

1.分光光度計/酶標儀預熱 30min 以上，調節波長(cháng)至 450nm，蒸餾水調零。

2.測定前將試劑一、二和四 37℃水浴 5min 以上。

3.樣本測定（按順序加入下列試劑）

充分混勻，室溫靜置 30min 后，450nm 處測定各管吸光值 A。

注意事項：

1、試劑三為酶，不可冷凍，使用時(shí)在冰上放置。

2、對照管只需要做三管，求平均值。

3、SOD 為什么有的樣本測定管大于對照管，對照管數值在什么范圍？對照管的范圍是 0.4-1。對照管吸光值過(guò)低可能是：

（1）試劑三活性低，可以適當減少稀釋倍數；

（2）沒(méi)有按順序加試劑；

（3）反應時(shí)間不夠，可以延長(cháng)反應時(shí)間（反應時(shí)間可以延長(cháng)到 40min）。

（4）對照管吸光值過(guò)高可能是試劑三未按操作說(shuō)明書(shū)稀釋相應倍數。

（5）可能是樣本中雜質(zhì)的影響太大，為了降低雜質(zhì)的影響一般，將樣本提取上清液用蒸餾水或提取液稀釋 10 倍后再測，通?？梢允箿y定正常。計算公式中乘以相應稀釋倍數。

SOD 活性計算：

1、抑制百分率的計算

抑制百分率＝(A 對照管－A 測定管) ÷A 對照管× 100%

盡量使樣本的抑制百分率在 10-90%范圍內。如果計算出來(lái)的抑制百分率小于 10%或大于90%，則通常需要調整加樣量后重新測定。如果測定出來(lái)的抑制百分率偏高，則需將樣本用提取液適當稀釋?zhuān)蝗绻麥y定出來(lái)的抑制百分率偏低，則需重新準備濃度比較高的待測樣本。

2、SOD 酶活性單位：在上述黃嘌呤氧化酶藕聯(lián)反應體系中抑制百分率為 50%時(shí)，反應體系中的SOD

酶活力定義為一個(gè)酶活力單位(U/mL)。

3、SOD 酶活性計算：

血清（漿）SOD 活性(U/mL)=[抑制百分率÷(1 －抑制百分率)×V 反總]÷V 樣

=20×抑制百分率÷(1 －抑制百分率) 組織、細菌或培養細胞SOD 活力計算：

按樣本蛋白濃度計算

SOD 活性(U/mg prot)=[抑制百分率÷(1 －抑制百分率)×V 反總]÷(V 樣×Cpr )

=20×抑制百分率÷(1 －抑制百分率)÷Cpr

需要另外測定，建議使用上海研謹生物科技有限公司BCA 蛋白質(zhì)含量測定試劑盒。按樣本鮮重計算

SOD 活性(U/g 鮮重)=[抑制百分率÷(1 －抑制百分率)×V 反總]÷(W ×V 樣÷V 樣總)

=20×抑制百分率÷(1 －抑制百分率)÷W c.按細菌或細胞個(gè)數計算

SOD 活力(U/104 cell)=[抑制百分率÷(1 －抑制百分率) ×V 反總]÷(500×V 樣÷V 樣總)

=0.04×抑制百分率÷(1 －抑制百分率)

V 反總：反應體系總體積，0.2mL；

V 樣：加入反應體系中樣本體積，0.01mL；

V 樣總： 加入提取液體積，1 mL； Cpr：樣本蛋白質(zhì)濃度，mg/mL ；

W：樣本質(zhì)量，g；500：細胞或細菌總數，500 萬(wàn)。

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