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牛呼吸道疾病綜合癥(BRDC)核酸檢測試劑盒(熒光RT-PCR法)
【產(chǎn)品名稱(chēng)】
商品名稱(chēng):牛呼吸道疾病綜合癥(BRDC)核酸檢測試劑盒(熒光RT-PCR法)
【包裝規格】50T/盒
【預期用途】
牛呼吸道綜合癥是由病毒和細菌等多個(gè)病因相互作用的多重感染引起的。具體因素有天氣和飼料的改變、畜舍過(guò)于擁擠、動(dòng)物缺乏休息、牛棚不舒適、長(cháng)途運輸后等。在這種情況下,瘦弱而營(yíng)養不良的幼畜十分容易患上牛呼吸道綜合征。本試劑盒適用于檢測牛呼吸道分泌物,鼻眼分泌物,肺部等樣本中的牛呼吸道疾病綜合癥RNA,適用于牛呼吸道疾病綜合癥感染的輔助診斷。
【檢驗原理】
本試劑盒用1對牛呼吸道疾病綜合癥特異性引物,結合1條特異性熒光探針,用一步法熒光RT-PCR技術(shù)對牛呼吸道疾病綜合癥RNA進(jìn)行體外擴增檢測,用于臨床上對可疑感染者的病原學(xué)診斷。
【試劑組成】
名 稱(chēng) | 規 格 |
BRDC酶液 | 50μL×1管 |
BRDC反應液 | 950μL×1管 |
BRDC陽(yáng)性質(zhì)控品 | 50μL×1管 |
陰性質(zhì)控品 | 50μL×1管 |
說(shuō)明:不同批號的試劑盒組分不可交互使用。
【儲存條件及有效期】
-20℃±5℃,避光保存、運輸、反復凍融不超過(guò)5次,有效期12個(gè)月。
【適用儀器】
ABI 、安捷倫MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、eppendorf等系列熒光定量PCR檢測儀。
【標本采集】
取腸內容物和腸系膜淋巴結;待檢活畜,取分泌物和排泄物于離心管中。
【保存和運輸】
上述標本短期內可保存于-20℃,長(cháng)期保存可置-70℃,但不能超過(guò)6個(gè)月,標本運送應采用2~8℃冰袋運輸,嚴禁反復凍融。
【使用方法】
1. 樣品處理(樣本處理區)
1.1 樣本前處理
組織樣品:每份組織分別從3個(gè)不同的位置稱(chēng)取樣品約1g,手術(shù)剪剪碎混勻后取0.5g于研磨器中研磨,加入1.5mL生理鹽水后繼續研磨,待勻漿后轉至1.5mL滅菌離心管中,8000rpm離心2min,取上清液100μL于1.5mL滅菌離心管中。
分泌物和排泄物樣品直接取100μL于1.5mL滅菌離心管中。
1.2 RNA提取
為了使實(shí)驗結果穩定、有效、可靠,建議使用商品化的RNA 提取試劑盒進(jìn)行提取,嚴格按照對應試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行操作。
2. 試劑配制(試劑準備區)
根據待檢測樣本總數,設所需要的PCR反應管管數為N(N=樣本數+1管陰性對照+1管陽(yáng)性對照;樣品每滿(mǎn)7份,多配制1份),每測試反應體系配制如下表:
試劑 | BRDC反應液 | 酶液 |
用量 | 19μL | 1μL |
3. 加樣(樣本處理區)
將步驟1提取的RNA、陽(yáng)性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品各取5μL,分別加入相應的反應管中,蓋好管蓋,混勻,短暫離心。
4. PCR擴增(核酸擴增區)
4.1 將待檢測反應管置于熒光定量PCR儀反應槽內;
4.2 設置好通道、樣品信息,反應體系設置為25μL;
熒光通道選擇:檢測通道(Reporter Dye)HEX檢測牛呼吸道疾病綜合癥,淬滅通道(Quencher Dye)NONE,請勿選擇ROX參比熒光。
4.3 推薦循環(huán)參數設置:
步驟 | 循環(huán)數 | 溫度 | 時(shí)間 | 收集熒光信號 |
1 | 1 cycle | 50℃ | 15min | 否 |
2 | 1 cycle | 95℃ | 3min | 否 |
3 | 45 cycles | 95℃ | 15sec | 否 |
55℃ | 30sec | 是 |
5. 結果分析判定
5.1 結果分析條件設定
設置Baseline和Threshold:一般直接按機器自動(dòng)分析的結果分析,當曲線(xiàn)出現整體傾斜時(shí),根據分析后圖像調節Baseline的start值(一般可在3~15范圍內調節)、stop值(一般可在5~20范圍內調節),以及Threshold的Value值(上下拖動(dòng)閾值線(xiàn)至高于陰性對照),重新分析結果。
5.2 結果判斷
陽(yáng)性:檢測通道Ct值≤38.0,且曲線(xiàn)有明顯的指數增長(cháng)曲線(xiàn)。
可疑:檢測通道38.0<Ct值<40.0,且出現典型擴增曲線(xiàn)的樣本建議重復試驗,重復試驗結果出現Ct值<40.0且有典型擴增曲線(xiàn)者為陽(yáng)性,否則為陰性。
陰性:樣本檢測結果無(wú)Ct值且無(wú)明顯的擴增曲線(xiàn)。
6. 檢測方法的局限性
? 樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質(zhì)量有關(guān);
? 樣本提取過(guò)程中沒(méi)有控制好交叉污染,會(huì )出現假陽(yáng)性結果;
? 陽(yáng)性對照、擴增產(chǎn)物泄漏,會(huì )導致假陽(yáng)性結果;
? 病原體在流行過(guò)程中基因突變、重組,會(huì )導致假陰性結果;
? 不同的提取方法存在提取效率差異,會(huì )導致假陰性結果;
? 試劑運輸,保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降,出現假陰性或定量檢測不準確的結果;
? 本檢測結果僅供參考,如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。
7. 質(zhì)控標準
陰性質(zhì)控品:無(wú)明顯擴增曲線(xiàn)且無(wú)Ct值顯示;
陽(yáng)性質(zhì)控品:擴增曲線(xiàn)有明顯指數生長(cháng)期,且Ct值≤30;
以上條件應同時(shí)滿(mǎn)足,否則實(shí)驗視為無(wú)效。
8. 性能指標
(1)敏感性:內控樣本敏感性為100%,綜合評價(jià)敏感性98%以上。最DI檢測限不低于1000copies/ml。
(2)特異性:100%。
(3)穩定性:批內及批間差異≤3%。
【注意事項】
? 所有操作嚴格按照說(shuō)明書(shū)進(jìn)行;
? 試劑盒內各種組分使用前應自然融化,完全混勻并短暫離心;
? 反應液應避光保存;
? 反應中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;
? 使用一次性吸頭、一次性手套和各區專(zhuān)用工作服;
? 樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區進(jìn)行,以免交叉污染;
? 實(shí)驗完畢后用10%次氯酸或75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器;
? 試劑盒里所有物品應視為污染物對待,并按照《微生物生物醫學(xué)實(shí)驗室生物安全通則》進(jìn)行處理。
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