綿羊痘(SPPV)、山羊痘病毒(GTPV)和牛結節性皮膚病病毒(LDSV)核酸檢測試劑

（熒光PCR法，外源內標）

包裝規格：48 T/盒

產(chǎn)品說(shuō)明：

采用Taqman探針技術(shù)，以羊痘病毒屬(GaPV)中綿羊痘病毒(SPPV)、山羊痘病毒(GTPV)和牛結節性皮膚病病毒(LDSV)的特異性保守基因為靶位點(diǎn)設計特異性引物和探針，用于樣品中SPPV、GTPV和LDSV核酸的輔助檢測。本產(chǎn)品引入了dUTP / UDG 系統，可降解含U的ssDNA和dsDNA，消除由PCR產(chǎn)物導致的交叉污染。 同時(shí)設置陽(yáng)性?xún)葘φ?(即內標，使用VIC報告基團)，通過(guò)檢測內標是否正常來(lái)監測qPCR體系中是否含有 PCR抑制物，避免出現假陰性結果。

產(chǎn)品組成：

注：不同批號產(chǎn)品的成分之間不可以混用或互換?。?！

儲存條件和保質(zhì)期：

在-20±5℃避光儲存，有效期12月。干冰運輸。重復凍融小于5次。生產(chǎn)日期，失效日期請見(jiàn)外包裝盒。

適用儀器：

ABI7500、宏石96P、Bio-Rad CFX96實(shí)時(shí)熒光PCR儀等。

樣品要求：

1、適用樣品類(lèi)型

活體或剖檢牛羊的皮膚丘疹、肺部病變組織、淋巴結、血液等樣品。

要求送檢新鮮樣品，禁止反復凍融！

2、樣品處理（核酸提取區）

參照《NY/T 541-2016 獸醫診斷樣品采集、保存與運輸技術(shù)規范》等標準進(jìn)行樣品前處理， 使用商業(yè)化的提取試劑盒提取樣品中的核酸。提取時(shí)，每200 μL陰性對照和處理后的樣品溶液中添加10 μL內標對照，提取后的核酸應立即檢測，否則凍存于-20±5℃，保存時(shí)間不超過(guò)6個(gè)月，禁止反復凍融！

*內標對照的其它使用方法：將內標對照混入 qPCR工作液中，但僅僅質(zhì)控擴增過(guò)程和監測qPCR體系中是否含有 PCR抑制物，不能質(zhì)控提取核酸過(guò)程。

檢測方法

為了防止污染，實(shí)驗需分區操作?。?！

注：核酸提取參照樣品要求，在核酸提取區進(jìn)行或在樣品處理區進(jìn)行。

1、試劑準備 (在試劑準備區進(jìn)行)

(1) 推薦方式（內標對照質(zhì)控核酸提取和核酸擴增過(guò)程）

取出試劑盒中的各組分以及自備試劑，室溫放置，待溫度平衡至室溫，混勻后備用；

根據檢測樣品數量，建議每次檢測均設置陰性對照和陽(yáng)性對照。將所需數量（N）的GaPV PreMix-2分配到每個(gè)微離心管（如八連管）中，20 μL/管。待檢樣品數為n時(shí)，所需反應數N=樣品數(n)+陽(yáng)性對照(1)+陰性對照(1)；

當準備使用時(shí)，再轉移到樣品處理區。

(2) 其它方式（內標對照僅質(zhì)控核酸擴增過(guò)程）

根據所檢測的樣品數量按照下表配制反應液，建議每次檢測均設置陰性對照和陽(yáng)性對照。待檢樣品數為n時(shí)， 需配制反應體系數N=待檢樣品數(n) +陽(yáng)性對照(1)+陰性對照(1)+1。

*qPCR工作液配制表（其它方式）

*注：本配制方法為在提取樣品核酸未加內標對照時(shí)的補救方法，不推薦。

將配制好的qPCR工作液充分混勻后瞬時(shí)離心，待用；當準備使用時(shí)，將等量的20 μL分配到每個(gè)微離心管（如八連管）中，并轉移到樣品處理區。

2、樣品加樣 (在樣品處理區進(jìn)行)

 在每個(gè)PCR管中加入5 μL經(jīng)提取的待測樣品和陰性對照、陽(yáng)性對照，蓋上管蓋， 瞬時(shí)離心，使液體全部沉于管底。

3、qPCR擴增 (在擴增與分析區進(jìn)行)

 (1) 熒光通道選擇

熒光基團選擇FAM通道檢測GaPV；選擇VIC 通道檢測內標；淬滅基團設置為none。如ABI qPCR儀，還需設置Passive Reference為none。其它儀器參考儀器說(shuō)明書(shū)。

(2) qPCR擴增程序設置

設置反應體系為25 μL。

4、結果分析 (以ABI7500 qPCR儀為例)

反應結束后，qPCR儀將自動(dòng)生成結果。若儀器自動(dòng)生成的擴增曲線(xiàn)或閾值線(xiàn)有異常，用戶(hù)可根據實(shí)際情況自行調整，基線(xiàn)Start值可以在 3~10，基線(xiàn)End值可設在 5~20，調整各擴增曲線(xiàn)的基線(xiàn)區相對水平即可。點(diǎn)擊Analyze 進(jìn)行分析。

5、質(zhì)量控制

試劑盒中各控制項應符合下列要求，否則實(shí)驗無(wú)效。

參考qPCR工作液配制表（其它方式）配制時(shí)，陽(yáng)性對照的VIC通道應均出現S型曲線(xiàn)，Ct值≦35。

檢驗結果的解釋

（1）若樣品的VIC通道呈典型的S形曲線(xiàn)且Ct≦35時(shí)，

A. 當FAM通道Ct≦35，判定為GaPV陽(yáng)性；

B. 當FAM通道Ct值在35到40之間時(shí)，需要觀(guān)察靶基因的擴增曲線(xiàn)是否呈S形，如果曲線(xiàn)呈S形，樣品應視為疑似GaPV陽(yáng)性，需重新檢測；復測結果若Ct值≦40且具有典型S形曲線(xiàn)，判定為GaPV陽(yáng)性；反之若為無(wú)Ct顯示、Ct>40或無(wú)典型S形曲線(xiàn)，則判定為GaPV陰性。

C. 當FAM通道Ct>40，判定為GaPV陰性。

（2）如果VIC通道的Ct值高于35，而沒(méi)有顯示明顯的S形擴增曲線(xiàn)，原因如下：

1) 樣品中存在PCR抑制劑，建議實(shí)驗前稀釋模板。

2) 核酸提取操作存在缺陷，建議重復核酸提取進(jìn)行檢測。

3) 在處理過(guò)程中沒(méi)有獲得合格的樣品，或者在運輸和儲存過(guò)程中樣品已經(jīng)降解，建議重新采樣。

檢驗方法的局限性

1) 陰性結果可能是由于從樣品中提取的核酸質(zhì)量低，儲存條件不當，儲存期不合適，樣品中存在抑制劑，核酸降解和核酸提取方法的提取效率差等原因。

2) 不合理的樣品采集、運送與保存條件，樣品中病毒含量過(guò)低，或不合理的實(shí)驗操作和環(huán)境很可能造成假陰性或假陽(yáng)性結果。其它臨床觀(guān)察和相關(guān)資料應結合測定，必要時(shí)再次進(jìn)行檢測。

3) 由于突變或其它原因，靶序列的序列變化可能會(huì )產(chǎn)生假陰性結果。

注意事項：

1) 本產(chǎn)品僅用于科研使用，使用前請仔細閱讀本說(shuō)明書(shū)。

2) 實(shí)驗前請熟悉和掌握需使用的各種儀器的操作方法和注意事項，對每次實(shí)驗進(jìn)行質(zhì)量控制。

3) 實(shí)驗室管理需嚴格遵照PCR基因擴增實(shí)驗室的管理規范，實(shí)驗人員必須進(jìn)行專(zhuān)業(yè)培訓，實(shí)驗過(guò)程嚴格分區進(jìn)行， 所有消耗品僅作一次性使用，實(shí)驗操作的每個(gè)階段使用專(zhuān)用儀器和設備，各區各階段用品不可交叉使用。

4) 所有檢測樣品均視為具有傳染性的物質(zhì)，實(shí)驗過(guò)程中穿工作服并經(jīng)常更換手套，以避免樣品間的交叉污染；

5) 樣品操作、廢棄物處理應符合相關(guān)法規要求：《微生物生物醫學(xué)實(shí)驗室生物安全通用準則》和《醫療廢物管理 條例》。

6) 所有試劑 (包括本產(chǎn)品中的組分與客戶(hù)自備試劑) 使用前均需徹底化凍、混勻。

7) 血液類(lèi)樣品溶血嚴重時(shí)，會(huì )使擴增曲線(xiàn)高度顯著(zhù)下降。因此，當使用該試劑盒同時(shí)檢測血液樣品原液和生理鹽水稀釋 樣品時(shí)，建議對2類(lèi)模板分別設置不同的閾值線(xiàn)，以保證結果的準確性。

8) 當出現多個(gè)樣品的Ct值>40時(shí)，可能是qPCR儀自動(dòng)生成的閾值線(xiàn)較高的原因，建議將閾值線(xiàn)高度設置在擴增曲線(xiàn) 最大熒光值的1/15左右后，重新分析。

本產(chǎn)品僅供科研使用，檢測結果不能用作臨床診斷判斷唯一依據

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