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間充質(zhì)干細胞成脂誘導分化試劑盒產(chǎn)品介紹
更新時(shí)間:2024-08-23 點(diǎn)擊量:77

間充質(zhì)干細胞成脂誘導分化試劑盒

,成脂誘導液

貨號:YJ-MSCYD-004

價(jià)格: 1780.0

規格: 200ml

產(chǎn)品描述

本產(chǎn)品為團隊精心優(yōu)化的間充質(zhì)干細胞成脂誘導分化試劑盒,可增強間充質(zhì)干細胞向成脂細胞分化的能力。

本產(chǎn)品僅用于科研用途,不可用于診斷、治療、臨床、家庭及其他用途。

產(chǎn)品組成成分及保存

試劑名稱(chēng)

體積

保存條件

有效期

地塞米松

200μL

-20℃

1 Year

IBMX

200μL

-20℃

1 Year

羅格列酮

200μL

-20℃

1 Year

胰島素

400μL

-20℃

1 Year

谷氨酰胺

2mL

-20℃

1 Year

雙抗

2mL

-20℃

1 Year

胎牛血清

20mL

-20℃

1 Year

基礎培養基

200mL

2-8℃

1 Year

油紅O貯存液

5mL

2-8℃(避光)

1 Year

? 注意

1.為保證產(chǎn)品的有效性,請避免反復凍融。

2.配制好的誘導培養基保存于2-8℃,有效期為2周,請根據實(shí)驗用量合理配制。

產(chǎn)品使用說(shuō)明

1. 成脂誘導分化完全培養基的配制

室溫條件下融化各因子及血清。各因子融化后,瞬時(shí)離心,使溶液集中于離心管底部。(注意:若因子或血清中有沉淀物,屬正?,F象,無(wú)須過(guò)濾,避免成分丟失。)

根據實(shí)驗用量,于無(wú)菌操作臺中配制誘導分化完全培養基,建議每次配制50mL,配制比例見(jiàn)下表:

試劑成分

配制比例

50mL配制體系

地塞米松

0.1%

50μL

IBMX

0.1%

50μL

羅格列酮

0.1%

50μL

胰島素

0.2%

100μL

谷氨酰胺

1%

500μL

雙抗

1%

500μL

胎牛血清

10%

5mL

基礎培養基

補充至所需體積

補充至總體積為50mL

2. 成脂誘導分化實(shí)驗步驟

建議取第3~5代、純度達90%以上、狀態(tài)良好的間充質(zhì)干細胞,將其消化下來(lái),離心收集,使用間充質(zhì)干細胞完全培養基調整細胞密度為1~5×10 5個(gè)cell/mL,均勻鋪于6孔板中,每孔2mL,置于37℃恒溫細胞培養箱中培養。

(注意:此處細胞密度及培養液體積以6孔板為例,若為其它培養器皿,請根據實(shí)際情況調整細胞密度及培養液體積。)

待細胞匯合度達80%~100%時(shí),即可進(jìn)行誘導分化。

小心吸棄細胞培養上清,沿孔壁緩慢加入提前配制好的誘導分化完全培養基,每孔2mL,置于37℃恒溫細胞培養箱中培養。

(注意:完全培養基加入細胞前需提前置于37℃預熱。)

2day換用新鮮的誘導分化完全培養基。換液時(shí),若細胞培養上清顏色變?yōu)槌吻宓狞S色,是由于細胞量較大,培養基消耗較快導致的,請及時(shí)調整為每日換液。

(注意:完全培養基加入前需提前置于37℃預熱。)

細胞誘導3周后,即可進(jìn)行油紅O染色鑒定。

3. 油紅染色分析

細胞誘導分化結束后,小心吸棄細胞培養上清,1×PBS潤洗1~2次。每孔加入1mL細胞固定液(4%中性甲醛溶液等),室溫固定30 min。

配制油紅O工作液:油紅O貯存液與蒸餾水按照32配制,(例:油紅O貯存液3mL,蒸餾水2mL),混勻。使用濾紙過(guò)濾,收集濾液,即為油紅O工作液。

(注意:成脂細胞內的油滴極易脫落,操作時(shí)須謹慎。)

細胞固定完成后,吸棄細胞固定液,1×PBS潤洗2次。沿孔壁緩慢加入油紅O染色液,每孔1mL,室溫染色30min。

(注意:油紅O工作液底部可能會(huì )有沉淀,吸取時(shí)盡量不要觸及底部。若細胞染色后有沉淀,PBS洗去即可。)

吸出染色液,PBS潤洗,去掉浮色。顯微鏡下觀(guān)察細胞染色效果。細胞內油滴著(zhù)色,呈紅色。

(注意:油紅O工作液不可重復使用,不建議回收。)

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質(zhì)量控制

無(wú)菌檢測(細菌、真菌和支原體檢測)

pH測試

滲透壓檢測

內毒素

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注意事項

僅限科研用。
培養體系中的一些組分是對人體健康有害的物質(zhì),請不要用暴露的皮膚接觸培養體系的液體和有培養體系的液體殘留的容器內部;這部分有害物質(zhì)的濃度和危害性都較低,如有接觸,立即用自來(lái)水沖洗即可。

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